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脂多糖对化学诱癌大鼠抗氧化系统的选择性损害作用 |
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ma);鲎试剂盒(上海伊华临床医学科研公司);超氧化物岐化酶(superoxide dismutase,SOD)测试盒、丙二醛(malondialdehyde,MDA)测试盒、谷胱甘肽过氧化物酶(glutathione peroxidase,GSH-Px)测试盒、过氧化氢酶(catalase,CAT)测试盒均由南京建成生物工程研究所提供。 (三)肝硬化癌变模型复制和分组处理:30只大鼠随机分为5组。正常对照(control)组只饮用自来水;TAA组饮用0.3 g/L TAA水;TAA+LPS组在诱癌的4~6月期间于0.3 g/L TAA饮水中加8 mg/L LPS(相当于每天 50 μg LPS/100 g BW);TAA+ST组在实验开始前一周作脾切除(splenectomy,ST)手术;TAA+ST+LPS组在TAA诱发肝癌模型基础上,施加同前两组相同的脾切除和8 mg/L LPS处理。诱癌6个月结束时,乙醚麻醉下,脾主动脉取血分离血浆及取2克肝组织制备肝匀浆。 (四)测定指标和方法:蛋白定量用双缩尿法,以牛血清白蛋白作标准;用鲎试剂盒测血浆内毒素;抗氧化酶测试盒测定SOD(羟胺法),GSH-Px(二硫对二硝基苯甲酸法),CAT(紫外法)和MDA(硫代巴比妥酸法),测定步骤按说明书操作。取肝中叶的1/2固定于10%甲醛液,石蜡包埋切片,HE染色,进行组织学观察。 (五)统计处理:数据以±s表示,用SPSS统计程序对结果作t检验和参数相关性分析。
结果
(一)内毒素血症和肝癌发生率:用0.3 g/L TAA诱发大鼠肝癌的6个月过程中,未见一动物死亡。在TAA作用4个月形成肝硬化时[5],给予外源性LPS(8 mg/L,2个月)可使实验动物体循环中LPS浓度升高9%(P<0.05);实验前作脾切除可使TAA诱癌动物肠源性内毒素血症水平明显提高20%(P<0.05);大鼠饮用0.3 g/L TAA 6个月,肝脏质地变硬,重量显著增加(P<0.01,资料未显示),肝表面形成增生结节呈浅黄色,癌变部分呈灰白色。镜下可见肝组织纤维化,假小叶形成;癌变肝细胞异型性,呈假腺管型结构;胞核深染,胞浆嗜碱性染色及低度分化现象。不同处理组肉眼可见的肝癌发生率与其内毒素血症水平密切相关(r=0.99,P<0.01)(表1)。
表1 不同处理组大鼠内毒素血症和肝癌发生率
Tab 1 Incidence of hepatocarcinoma and endotoxemia in rats (±s)
Group n Endotoxin (×103 EU/L) Hepatocarcinoma rate Visible Under microscope Control 5 95±15 0%(0/5) 0%(0/5) TAA 6 108±12 17%(1/6) 50%(3/6) TAA+LPS 6 118±12* 33%(2/6) 50%(3/6) TAA±ST 6 130±31* 50%(3/6) 67%(4/6) TAA+ST+LPS 6 130±18*△ 67%(4/6) 67%(4/6)
*P<0.05,vs control group;△P<0.05,vs TAA group (二)脂质过氧化损伤:MDA是脂质过氧化反应的终末产物,间接反映自由基水平或肝组织脂质过氧化损伤的程度。表2可见,TAA+LPS组和TAA+ST+LPS组大鼠肝脏MDA含量较高,表明大鼠肝硬化时给予外源性LPS能加剧肝脏脂质过氧化损伤作用。肝匀浆MDA浓度比血浆高30~56倍,提示肝脏是自由基产生和清除的最主要器官之一。
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