。目前的研究方法有微电极法、 放射性检验、电压敏感性染色及膜片钳技术[8，12-14]，其中以膜片钳技术应用最为普遍。由于角膜内皮细胞非选择性阳离子通道的存在[11]，离子通过该通道仅需电压驱动，当阻断通过此通道的电流并将细胞的电流钳制在0 mA后，所测定的电压值即为膜电位[13]。 本实验获得的RCECs膜静息电位绝对值小于钾离子的平衡电位（－90 mV）的绝对值，可能由于细胞膜上存在其他离子通道，改变了膜电导。此外，生电性转运体的（如钠泵）活性和细胞的输入阻抗也会影响细胞的静息膜电位。研究发现阴离子激活的钾通道在生理状态下仅部分开放，形成细胞的输入电导。角膜的透明性与角膜内皮细胞的静息电位密切相关，主要与K+通道有关。当K+再循环通路受阻，导致水肿发生。研究已证实编码通道Kir3.3[11]及Kir2.1[9]的氨基酸序列，后者表达产生内向整流的钾离子电流，可被外源性Ba2+和Cs+阻断，并呈现电压和浓度依赖性，该通道与角膜内皮细胞的膜电位调节、内皮细胞的跨膜转运等功能有关[15-16]。
全细胞模式下记录的全细胞电流系宏观电流，包含了多种离子通道的综合作用，电流包含各通道的成分。通过改变实验条件，可以分离各种通道电流，如控制灌流液的温度、特定的刺激程序以及特异性的工具药在一定的实验条件时，可将另外一种或几种通道电流阻断，从而得到单一通道的电流。本研究中所记录的全细胞电流以外向电流为主，可能主要是A电流和K+通道电流。实验中所记录到的内向电流可能由阴离子选择性K+通道、Na+通道、Ca2+通道等共同形成。本实验中原代细胞较第2代细胞的全细胞电流大，提示原代培养的RCECs电生理特性更接近活体细胞状态。在本研究记录过程中发现的电流变异，可能与细胞状态有关。出现的快相、短时程的的微小内向电流可能与生电钠泵或A电流相关。具有电压及时间依赖性的外向电流应当为K＋通道开放所致。状态良好的RCECs可观察到完整的全细胞电流。
本研究成功建立了体外培养RCECs全细胞模式记录方法，是对角膜内皮电生理学方面的初步探索。相信在此基础上，会推动角膜内皮细胞的电生理功能研究向纵深发展。
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