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地塞米松对SUNE

标记)试剂盒及地塞米松均为Sigma公司产品。2. [32?P]-dCTP:匹兹堡大学核医学研究所合成,强度为74×104Bq/μL,22.2×104 Bq/pmol。3.RT-PCR试剂盒(一步法),1 kb DNA ladder, RPMI-1640培养液及胎牛血清(fetal calf serum, FCS),购于GIBCO公司。4.β-肌动蛋白(β-actin)基因片段,由匹兹堡大学癌症研究所提供。5.RNA抽提、纯化试剂盒(UltraspecTM RNA):购自Biotecx-laboratories公司。6.细胞株:SUNE-1由中山医科大学肿瘤研究所提供[7],B95-8[8]及K562由匹兹堡大学癌症研究所提供。
  二、方法:
  1.按常规方法进行细胞培养、传代。三种肿瘤细胞各取终浓度为5×10-6个/mL,2 mL经台盼蓝染色检查,死细胞小于5%,分成实验组和对照组备用。2.实验组加入终浓度为2×10-6 mol/L地塞米松,对照组则加入等体积的RPMI-1640培养液,继续培养18 h[9]。3.RNA抽提:用UltraspecTM RNA,其提取方法是:①倾去培养液,直接向培养瓶中加入UltraspecTM RNA溶液1 mL,颠倒混匀数次,在4℃放置5 min;②将液体移至新的1.5 mL Eppendorf管中,加入0.2 mL氯仿,振荡混匀后,放置冰上5 min;③4℃,12 000×g 15 min离心;④小心地将4/5上清液移至新的Eppendorf管中,加入等体积的异丙醇,混匀后4℃放置10 min;⑤4℃,12 000×g 10 min离心后,倾去上清液,分别用1 mL 75%的乙醇洗两次,每次先振荡混匀,再在4℃,7500×g 5 min离心;⑥真空干燥10 min,用30~40 μL 0.1%焦磷酸乙二酯(DEPC)水溶解,经紫外分光光度法定量后,-20℃储存备用。4.RNA定量:用紫外分光光度法和电泳法[10]。根据OD260定量:根据OD260/OD280分析其纯度,再根据紫外分光光度法测定的结果,各取5.0 μg进行常规RNA电泳,并在紫外灯下观察、拍摄。5.β-肌动蛋白基因片段和EBV-BHRF1基因片段探针标记及纯化:用缺口翻译法(nick translation)[10]。6.打点杂交(Dotblot)[10]。采用1:2等比释释法,即在5.0 μL的总体积内分别含有RNA样品量是5.0 μg→2.5 μg→1.25 μg→0.625 μg。70℃变性15 min后,将样品加在醋酸纤维膜上,经紫外交联机自动交联后,42℃预杂交2 h,再与β-actin探针在42℃杂交8 h或过夜。经常规(1)在室温下用2×SSC,0.1% SDS溶液100 mL洗2次,各10 min;(2)53℃,用2×SSC,0.1% SDS溶液洗3次,各20 min,用100 mL;(3)53℃,用pH 7.2 Na3PO4,1 mmol/L EDTA,0.1%SDS洗2次,每次15 min;(4)53℃,用pH 7.2 Na3PO4 1 mmol/L EDTA,1%SDS洗2次,每次15 min。洗膜后,在暗房中压片,曝光。若β-actin各组的曝光强度基本一致,再用0.01%×SSC,0.1% SDS经100℃×5 min作用后去除β-actin探针。洗膜后再经上述预杂交2 h后,加入EBV-BHRF1探针,杂交8 h以上。再洗膜。曝光。7.反转录PCR(RT-PCR)一步法检测3种细胞株中BHRF1基因在地塞米松作用前后的表达差异。以β-actin作为内参照。反应条件为:50℃ 30 min→94℃ 2 min→(94 ℃ 30 min, 55℃ 30 min→72℃ 60 min,共25次循环)→72℃ 10 min。取20 μL电泳。

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