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白介素6拮抗N甲基D天门冬氨酸诱导的神经元凋亡

CCCACCGAACTCAAAGAAGG-3’,预计扩增片段长度为129 bp;Bax-sense: 5’-ATGGGCTGGACACTGGACTTC-3’,Bax-antisense:5’- GAGCGAGGCGGTGAGGAC-3’,预计扩增片段长度为146 bp;caspase-3-sense:5’-GGAACGAACGGACCTGTG-3’,caspase-3- antisense:5’-GCCTCCACTGGTATCTTCTG-3’,预计扩增片段长度为188 bp;β-actin-sense:5’-CGTTGACATCCGTAAAGACC-3’,β-actin-antisense:5’-TAGAGCCACCAA TCCACAC-3’,预计扩增片段长度为176 bp。设定PCR反应程序:95 ℃ 5 min 预变性,94 ℃ 20 s,62 ℃ 20 s,72 ℃ 20 s,循环40次。

    1.5   数据处理及统计学分析   Real-time PCR的结果以Ct值表示, 即PCR反应指数增长初期荧光信号跨越阈值时的反应循环数。相对定量采用比较Ct法, 根据等式Fold = 2-△△Ct来计算处理组和对照组之间目的基因的相对表达差异[10],其中△Ct值代表同一样本中目的基因和管家基因的Ct值差异,而△△Ct值表示处理组和对照组间的△Ct值差异,计算结果以两组间目的基因拷贝数的比值,即Fold值来表示。本实验数据都用均数±标准差表示,采用SPSS 11.0统计软件中方差分析进行数据的处理和比较,以P<0.05表示差异具有统计学显著意义。

    2   结      果

    2.1   IL-6预防NMDA诱导的Bcl-2 mRNA表达抑制   CGNs用IL-6(40 ng/ml)预处理8 d后,用NMDA(100 μmol/L)刺激30 min,然后用Real-time PCR法检测神经元内Bcl-2 mRNA的表达水平。结果显示,未用IL-6预处理的神经元,在用NMDA刺激后,其表达Bcl-2 mRNA显著少于未用任何处理的对照组(图1);单独用IL-6预处理神经元后,未改变其中Bcl-2 mRNA的表达(图1);神经元用IL-6预处理,然后用NMDA刺激,其B

cl-2 mRNA的表达高于未用IL-6预处理的神经元(图1),说明IL-6可预防NMDA诱导的神经元Bcl-2 mRNA表达抑制。

    2.2   IL-6拮抗NMDA诱导的Bax mRNA表达增加   与未用任何处理的神经元相比,NMDA显著加强Bax mRNA的表达(图2)。单纯IL-6对神经元的Bax mRNA表达无抑制作用(图2)。神经元用IL-6预处理后再用NMDA刺激,其表达Bax mRNA水平显著低于未用IL-6预处理的NMDA刺激组(图2)。

    2.3   IL-6抑制NMDA诱导的神经元内caspase-3 mRNA表达增加   结果如图3所示,与未用任何处理的神经元比较,NMDA显著加强caspase-3 mRNA的表达;IL-6单独处理对神经元的caspase-3 mRNA表达无明显抑制作用;NMDA刺激已用上述IL-6预处理的神经元后,神经元表达的caspase-3 mRNA水平明显低于未用IL-6预处理的神经元,已接近对照水平(图3)。

    3   讨      论

    正常情况下细胞凋亡是一种生理性调节机制,神经细胞凋亡被认为是维持神经系统生长发育动态平衡的必要手段,但在病理因素干扰下,如兴奋性氨基酸毒性导致细胞内钙水平升高,在众多基因的参与下,细胞凋亡异常,则会导致许多疾病的发生。体内外实验证明谷氨酸的兴奋性毒性主要是通过激活NM

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