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白细胞介素1 肿瘤坏死因子 在膝关节原发性骨关节病发病中的作用

es were able to produce TNF-αexce two samples.Conclusions -1β amd TNF-αmoght be involved in regulating the pathogenesis of OA.TNF-αfrom synoviocytes might not be mauor source iv synovial fluid.Human synoviocytes are able to secret IL-1β in response to physiologic amd inflammatory stimuli.Synoviocytes probably may increase the synovial fluid levels of IL-1β,which can contribute to important manifestations of osteoarthrosis.
  【Key words】 Osteoarthritis Knee joint Interleukin-1 Tumor necrosis factor

  近年来,在关节疾病发生、发展的研究中,细胞因子的介导作用日益受到重视。本研究通过检测关节滑液以及关节传代滑膜细胞上清液中IL-1β、TNF-α的含量,旨在探讨滑膜参与骨关节病(OA)的机理,为防治OA提供依据。

材料与方法

一、标本来源

  1.原发性骨关节病组(OA组):1997年3月~1998年2月北京协和医院骨科20例患者(根据ACR诊断标准)[1],其中男4例,平均年龄(61.00±10.10)岁(56~68岁),平均病程(5.25±3.59)年;女16例,平均年龄(64.13±7.69)岁(52~75岁),平均病程(10.80±7.93)年。均排除其他骨关节疾病。
  2.对照组(非OA组):5例,其中男3例,平均年龄48岁;女2例,平均年龄52岁。1例男性标本来源于新鲜尸体(6小时内);1例男性患者为左股骨干下段骨折行髓内钉固定术者;另1例为下肢动脉栓塞截肢者;2例女性标本来源于下肢动脉栓塞截肢者。所有病例均无关节病变。

二、实验方法

(一)滑液准备

  将膝原发性骨关节病行关节表面置换时抽取的滑液,1500转/分,离心10分钟取上清液100μl分装Eppendorf管,-20℃保存待测细胞因子[2,3]。由于有4例抽不出关节滑液,故实际滑液标本为16例,其中女性12例,平均年龄(64.5±7.57)岁,平均病程(11.25±7.87)年;4例男性与5例对照组情况同上述。

(二)滑膜细胞的分离培养

  OA组滑膜取自20例膝关节表面置换者,正常对照5例。分离平滑光亮的滑膜组织,RPMI1640洗液漂洗后尽量剪碎组织;0.05%I型胶原酶(Sigma产品,1mg/ml)消化组织2~3小时,100目不锈钢网过滤,1500转/分,离心5分钟,弃上清液,RPMI1640(含体积分数为10%的小牛血清,青霉素100u/ml,链霉素100u/ml)稀释细胞成悬液,接种至培养瓶中,置37℃,体积分数为5%的CO2/体积分数为95%的空气孵箱中培养,24小时后贴壁,将未贴壁细胞弃去,换新鲜完全RPMI1640液传代培养,第4~5代时待用[4]。

(三)滑膜细胞的处理

  将贴壁细胞用0.25%的胰酶(无钙镁Hank液配制并用NaHCO3调节pH值为7.2)消化,转移贴壁细胞至24孔板中培养,1×105个/孔培养48小时后,加入脂多糖(LPS)20μg/ml刺激3孔,另外用磷酸盐缓冲液(PBS)刺激3孔作为平行对照。培养72小时后收集上清液100μl分装Eppendorf管,-20℃冻存待测细胞因子。

(四)细胞因子生物活性的测定

  1.IL-1β含量的测定:采用双抗体夹心ELISA(酶联免疫吸附实验)法。在已预包被抗IL-1β单抗板石孔内加入标准品(2000pg/ml倍比稀释6个梯度)和待测上清样品各100μl,对照孔加完全培养基100μl,用封板胶封闭反应孔,置37℃60分钟后

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