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Runx3基因甲基化与胃癌发生和转移的关系

作者:李华 李勇 范立侨 赵雪峰 宋振川 赵群 王力利 焦志凯 刘羽 

【摘要】  目的探讨Runx3基因启动子甲基化与胃癌发生发展过程的关系。方法采用逆转录聚合酶链反应(RTPCR)检测80例胃癌组织及肿瘤周围粘膜组织中Runx3 mRNA的表达,同时用甲基化特异性PCR(MSP)方法检测Runx3基因启动子甲基化情况。结果80例胃癌组织标本中Runx3基因的表达(0.5971±0.1013)较肿瘤周围组织中表达明显下调(0.8297±0.2912),差异有统计学意义(P<0.05)。正常粘膜组织中未发现有Runx3基因启动子的甲基化,80例胃癌组织中有43例检测到Runx3基因启动子的甲基化,胃癌组织Runx3基因启动子甲基化率显著增高(P<0.05)。胃癌标本中Runx3 mRNA的表达与其病理临床特征密切相关,在低分化和有淋巴结转移胃癌组织标本中Runx3 mRNA的表达显著下调(P<0.05)。结论Runx3基因启动子甲基化是导致Runx3基因失活的主要原因之一并且与胃癌的发生、发展密切相关。

【关键词】  胃癌;Runx3基因;RTPCR;DNA甲基化

    1资料与方法

    1.1资料

    1.1.1标本80例胃癌组织标本取自我院2005年1月~8月的手术切除标本,立即放液氮中速冻,-80℃冻存备用。同时选取癌旁5cm组织作为对照。年龄28~80岁,中位年龄57岁,男45例,女35例,有淋巴结转移45例。所有标本术后均经病理证实。

    1.1.2试剂Trizol 购自Invitrogen公司。cDNA第一链反应试剂盒购自Fermentas公司。PCR引物序列由上海生工生物工程公司合成。DNA纯化试剂盒购自Promega公司,氢酯和亚硫酸氢钠购自SIGMA公司。

    1.2方法

    1.2.1组织总RNA提取将组织标本研磨后,采用Trizol试剂按照说明书提取组织样本总RNA,备用。

    1.2.2逆转录多聚合酶链反应(RTPCR)紫外分光光度计定量总RNA,调整浓度为1μg/μl。按cDNA第一链反应试剂盒说明书采用随机引物法合成cDNA。用GAPDH做为内参照进行PCR。Runx3的引物序列:上游:5 GATGGCAGGCAATGACGA3 ,下游:5 TGCTGAAGTGGCTTGTGGT3 , 扩增长度:353bp。GAPDH的引物序列:上游:5 AACGGATTTGGTCGTATTG3 ,  下游:5 GGAAGATGGTGATGGGATT3 ,扩增长度:208bp。PCR 参数: 94℃ 5min变性; 94℃  45s, 55℃ 55s, 71℃ 45s,  32个循环;  72℃延伸7min。PCR产物于2%琼脂糖电泳,电压60V,55min。Gel ID凝胶图像分析系统摄片分析测定其光密度。计算各个样本Runx3积分光密度(条带强度× 条带面积)与GAPDH内对照积分光密度的比值, 反映Runx3 mRNA表达的变化。

    1.2.3DNA提取、纯化和亚硫酸盐修饰称取150mg标本在未解冻时迅速用眼科剪剪碎,然后按DNA纯化试剂盒说明书提取DNA。取1μg   DNA加入50μl总体积中, 加2mol/L  NaOH使其终浓度为0.2mol/L, 37℃变性处理10min。再加入新鲜配制10mmol/L氢酯20μl,520μl的亚硫酸氢钠,置于50℃水浴16h,修饰后的DNA用Wizard DNA clean up system纯化,加入NaOH (终浓度0.3mol/L)室温变性5min,加入3mol/L的醋酸钠中和后,乙醇沉淀回收DNA,此DNA溶于50μl TE缓冲液中, -20℃贮

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